国产乱人伦精品一区二区在线观看,福利视频一区二区,深夜国产福利,伊人网在线播放,欧美色图五月天

FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素熒光參數，具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點；雙鍵操作，具圖形顯示屏，內置鋰電和數據存儲，廣泛應用于研究植物的光合作用、脅迫監測、除草劑檢測或突變體篩選，還可用于生態毒理的生物檢測，如通過不同植物對土壤或水質污染的葉綠素熒光響應，找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。FP110配備多種葉夾型號，用于不同的樣品與研究。

應用領域

適用于光合作用研究和教學，植物及分子生物學研究，農業、林業，生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變篩選等。

· 植物光合特性研究

· 光合突變體篩選與表型研究

· 生物和非生物脅迫的檢測

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 農業和林業育種、病害檢測、長勢與產量評估

· 除草劑檢測

· 教學

功能特點：

§ 結構緊湊、便攜性強，LED光源、檢測器、控制單元集成于僅手機大小的儀器內，重量僅188g

§ 功能強大，是葉綠素熒光技術的高端結晶產品，具備了大型熒光儀的所有功能，可以測量所有葉綠素熒光參數

§ 內置了所有通用葉綠素熒光分析實驗程序，包括3套熒光淬滅分析程序、3套光響應曲線程序、OJIP快速熒光動力學曲線等

§ 高時間分辨率，可達10萬次每秒，自動繪出OJIP曲線并給出26個OJIP–test參數

§ FluorPen專業軟件功能強大，可下載、展示葉綠素熒光參數圖表，也可以通過軟件直接控制儀器進行測量

§ 具備無人值守自動監測功能

§ 內置藍牙與USB雙通訊模塊，GPS模塊，輸出帶時間戳和地理位置的葉綠素熒光參數圖表

§ 配備多種葉夾型號：固定葉夾式（適于實驗室內暗適應或夜間快速測量）、分離葉夾式（適用于野外暗適應測量）、探頭式（透明光纖探頭，具備葉片固定裝置，用于非接觸性測量監測或光適應條件下的葉綠素熒光監測）、用戶定制式等

§ 可選配野外自動監測式熒光儀，防水防塵設計

測量程序與功能

· Ft：瞬時葉綠素熒光，暗適應完成后Ft＝F₀

· QY：量子產額，表示光系統II 的效率，等于Fv/Fm(暗適應狀態)或ΦPSII (光適應狀態)。

· OJIP：快速熒光動力學曲線，用于研究植物暗適應后的快速熒光動態變化

· NPQ：熒光淬滅動力學曲線，用于研究植物從暗適應到光適應狀態的熒光淬滅變化過程。

· LC：光響應曲線，用于研究植物對不同光強的熒光淬滅反應。

· PAR：光合有效輻射，測量環境中植物生長可以利用的400-700nm實際光強（限PAR型號）。

技術參數

· 測量參數包括F₀、Ft、Fm、Fm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、PAR（限PAR型號）、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多個葉綠素熒光參數，及3種給光程序的光響應曲線、3種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等

· OJIP–test時間分辨率為10μs（每秒10萬次），給出OJIP曲線和26個參數，包括F₀、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F₀、Fv/F₀、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等

· 測量程序：Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、NPQ3、LC1、LC2、LC3、PAR（限PAR型號）、Multi無人值守自動監測

· 葉夾類型：FP110/S固定葉夾式、FP110/D分離葉夾式、FP110/P探頭式、FP110/X用戶定制式

· PAR傳感器（限PAR型號）：80o入射角余弦校正，讀數單位μmol(photons)/m2.s，可顯示讀數，檢測范圍400-700 nm

· 測量光：每測量脈沖**0.09μmol(photons)/m2.s，10-100%可調

· 光化學光：10-1000μmol(photons)/m2.s可調

· 飽和光：**3000μmol(photons)/m2.s，10-100%可調

· 光源：標準配置藍光470nm，可根據需求配備不同波長的LED光源

· 檢測器：PIN光電二極管，667–750nm濾波器

· 尺寸大小：超便攜，手機大小，134×65×33mm，重量僅188g

· 存貯：容量16Mb，可存儲149000數據點

· 顯示與操作：圖形化顯示，雙鍵操作，待機8分鐘自動關閉

· 供電：可充電鋰電池，USB充電，連續工作48小時，低電報警

· 工作條件：0–55℃，0–95%相對濕度（無凝結水）

· 存貯條件：-10–60℃，0–95％相對濕度（無凝結水）

· 通訊方式：藍牙+USB雙通訊模式

· GPS模塊：內置

· 軟件：FluorPen1.1專用軟件，用于數據下載、分析和圖表顯示，輸出Excel數據文件及熒光動力學曲線圖，適用于Windows 7及更高操作系統

操作軟件與實驗結果

產地：捷克

應用案例：

2017年4月，美國國家航空航天局（NASA）新一代先進植物培養器（Advanced Plant Habitat，APH）搭載聯盟號MS-04貨運飛船抵達國際空間站。宇航員使用FluorPen手持儀葉綠素熒光儀在其中開展植物生理學及太空食物種植（growth of fresh food in space）的研究。

參考文獻

1. F Dang， et al. 2019. Discerning the Sources of Silver Nanoparticle in a Terrestrial Food Chain by Stable Isotope Tracer Technique. Environmental Science & Technology 53(7): 3802-3810

2. N Moghimi， et al. 2019. New candidate loci and marker genes on chromosome 7 for improved chilling tolerance in sorghum. Journal of Experimental Botany70(12): 3357–3371

3. M Rafique， et al. 2019. Potential impact of biochar types and microbial inoculants on growth of onion plant in differently textured and phosphorus limited soils. Journal of Environmental Management247: 672-680

4. P Soudek， et al. 2019. Thorium as an environment stressor for growth of Nicotiana glutinosa plants. Environmental and Experimental Botany164: 84-100

5. JA Pérez-Romero， et al. 2019. Investigating the physiological mechanisms underlying Salicornia ramosissima response to atmospheric CO₂ enrichment under coexistence of prolonged soil flooding and saline excess. Plant Physiology and Biochemistry135: 149-159

6. D Shao， et al. 2019. Physiological and biochemical responses of the salt-marsh plant Spartina alterniflora to long-term wave exposure. Annals of Botany， DOI: 10.1093/aob/mcz067

7. C Cirillo， et al. 2019. Biochemical， Physiological and Anatomical Mechanisms of Adaptation of Callistemon citrinus and Viburnum lucidum to NaCl and CaCl₂ Salinization. Front. Plant Sci. 10:742

8. T Savchenko， et al. 2019. Waterlogging tolerance rendered by oxylipin-mediated metabolic reprogramming in Arabidopsis. Journal of Experimental Botany70(10): 2919–2932

9. M Liu， et al. 2019. Strong turbulence benefits toxic and colonial cyanobacteria in water: A potential way of climate change impact on the expansion of Harmful Algal Blooms. Science of The Total Environment670: 613-622

10. PK Tiwari， et al. 2019. Liquid assisted pulsed laser ablation synthesized copper oxide nanoparticles (CuO-NPs) and their differential impact on rice seedlings. Ecotoxicology and Environmental Safety176: 321-329

11. JA Pérez-Romero， et al. 2018. Atmospheric CO₂ enrichment effect on the Cu-tolerance of the C₄ cordgrass Spartina densiflora. Journal of Plant Physiology220: 155-166

12. SK Yadav， et al. 2018. Physiological and Biochemical Basis of Extended and Sudden Heat Stress Tolerance in Maize. Proceedings of the National Academy of Sciences 88(1): 249-263

13. D Balfagón， et al. 2018. Involvement of ascorbate peroxidase and heat shock proteins on citrus tolerance to combined conditions of drought and high temperatures. Plant Physiology and Biochemistry127: 194-199

14. JI Vílchez， et al. 2018. Protection of Pepper Plants from Drought by Microbacterium sp. 3J1 by Modulation of the Plant's Glutamine and α-ketoglutarate Content: A Comparative Metabolomics Approach. Front. Microbiol. 9:284

15. MC Sorrentino， et al. 2018. Performance of three cardoon cultivars in an industrial heavy metal-contaminated soil: Effects on morphology， cytology and photosynthesis. Journal of Hazardous Materials351: 131-137

16. E Niewiadomska， et al. 2018. Lack of tocopherols influences the PSII antenna and the functioning of photosystems under low light. Journal of Plant Physiology223: 57-64

17. S Singh， et al. 2018. Cadmium toxicity and its amelioration by kinetin in tomato seedlings vis-à-vis ascorbate-glutathione cycle. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology178: 76-84

18. EL Fry， et al. 2018. Drought neutralises plant–soil feedback of two mesic grassland forbs. Oecologia186(4): 1113–-125

附：OJIP參數及計算公式

Bckg = background

Fo: = F50μs; fluorescence intensity at 50 μs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)